05 · 多组学生信

多组学生信平台

整合基因组学、转录组学、蛋白质组学、代谢组学与表观基因组学等多层次组学数据与生物信息学分析流程,支持靶点发现、疾病机制解析、生物标志物挖掘及基因编辑安全性评估。

WGS/WESbulk/scRNA-seq蛋白质组 代谢组WGBS甲基化ATAC-seqHi-C

技术背景与基本原理

二代测序将基因组、转录组与表观组统一为可计数的数据类型:DNA 重测序用于变异、RNA 逆转录后测序用于转录与剪接。单细胞技术将方差分解到细胞层面,多模态方法尝试联合 RNA、蛋白、染色质可及性等。WGBS 通过亚硫酸盐将未甲基 C 读成 T 获得 CpG 水平甲基化;ATAC-seq 以转座酶切开放染色质获得调控元件图;Hi-C 通过交联-连接揭示三维基因组结构。

在基因编辑与药物研发中的价值

多组学联合可连接“编辑-转录-表型”,支撑靶点发现、机制与生物标志物挖掘;生信需与实验设计、批次效应控制同步规划。

核心组学服务

每个组学维度均配备标准化数据处理流程与专业生信分析报告。

基因组学

全基因组 / 外显子测序

WGS(全基因组测序)提供单核苷酸变异(SNV)、小片段插入缺失(Indel)、拷贝数变异(CNV)及结构变异(SV)的全面检测;WES聚焦编码区,成本效益更高。

  • 测序深度:WGS ≥30×;WES ≥100×
  • 分析流程:BWA-MEM比对 → GATK HaplotypeCaller变异检测 → ANNOVAR注释
  • 适用:肿瘤突变谱、遗传病诊断、iPSC质检
转录组学

bulk RNA-seq & 单细胞 scRNA-seq

bulk RNA-seq检测细胞群体平均基因表达,适合条件比较与通路分析;scRNA-seq在单细胞分辨率揭示细胞异质性、稀有细胞类型及发育轨迹。

  • 平台:Illumina NovaSeq(bulk);10x Genomics Chromium(scRNA-seq)
  • 分析:DESeq2/edgeR差异基因;Seurat/Scanpy单细胞聚类
  • 可整合scATAC-seq实现多模态分析
  • Hao et al., Cell 2021(Seurat v4)
蛋白质组学

质谱蛋白质组

基于LC-MS/MS的数据依赖采集(DDA)与非标定量(label-free)或TMT标记定量,检测蛋白质表达、翻译后修饰(磷酸化、泛素化等)及蛋白质互作。

  • 鉴定深度:细胞裂解液通常覆盖5,000–8,000个蛋白
  • 分析:MaxQuant/Perseus定量;STRING/Cytoscape互作网络
  • 磷酸化蛋白质组学:TiO₂富集 + LC-MS/MS
代谢组学

靶向 / 非靶向代谢组

LC-MS或GC-MS检测细胞/组织/培养基中的小分子代谢物,结合同位素标记示踪(¹³C-葡萄糖)可追踪代谢通量,揭示代谢重编程机制。

  • 非靶向:全谱代谢物发现,HMDB/KEGG注释
  • 靶向:氨基酸、有机酸、核苷酸、脂质等定量检测
  • 代谢通量分析(¹³C-MFA)支持合成生物学优化
表观基因组学

WGBS / ChIP-seq / ATAC-seq

全基因组亚硫酸氢盐测序(WGBS)检测DNA甲基化;ChIP-seq鉴定组蛋白修饰(H3K27ac、H3K4me3等)和转录因子结合位点;ATAC-seq检测染色质开放区域。

  • WGBS:单碱基分辨率CpG甲基化,覆盖率 >95%
  • ATAC-seq:Buenrostro et al., Nature Methods 2013
  • 多维度表观遗传整合分析,可结合RNA-seq
三维基因组

Hi-C 染色质构象分析

Hi-C技术通过交联、酶切与连接捕获基因组三维空间构象,鉴定拓扑关联域(TAD)、区室(A/B compartment)及染色质环(loop),解析调控元件与基因的远程互作。

  • Lieberman-Aiden et al., Science 2009
  • 分析工具:Juicer、HiCExplorer、cooler
  • 适用于评估基因组编辑对染色质构象的影响

标准分析流程

组学类型数据产出核心分析工具交付内容
WGS/WESFASTQ → VCFBWA、GATK、ANNOVAR变异注释表、质控报告
bulk RNA-seqFASTQ → count matrixHISAT2、featureCounts、DESeq2差异基因表、KEGG/GO富集图
scRNA-seqFASTQ → cell×gene矩阵Cell Ranger、Seurat/ScanpyUMAP聚类图、marker基因表
蛋白质组raw → 定量矩阵MaxQuant、Perseus差异蛋白表、火山图、网络图
WGBSFASTQ → methylation callBismark、DSSDMR列表、甲基化热图
ATAC-seqFASTQ → peakBowtie2、MACS2、DiffBind开放区域注释、motif分析

参考文献

内容依据公开论文,不构成对具体服务结果的承诺。

Hao Y, et al. Integrated analysis of multimodal single-cell data. Cell. 2021;187(13):3573–3587意义与启发:提供多模态单细胞数据整合的算法框架,体现实验从单一 RNA 向联合测读发展。
Buenrostro JD, et al. Transposition of native chromatin for fast and sensitive epigenomic profiling of open chromatin, DNA-binding proteins and nucleosome position. Nat Methods. 2013;10:1213–1218意义与启发:以 Tn5 切开放区为主的 ATAC-seq 开创性工作,是调控组学与可及性研究的主力方法。
Lieberman-Aiden E, et al. Comprehensive mapping of long-range interactions reveals folding principles of the human genome. Science. 2009;326(5950):289–293意义与启发:提出 Hi-C 全基因组长程相互作用图谱,TAD/区室等概念为编辑位点与远端调控提供空间语境。

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